البرولين (%)

2.43

1.65

1.98

0.73

1.88

1.81

2.43

2.2 المواد القياسية المستخدمة في منحنى معايرة التوزيع النسبي للكتلة الجزيئية: الأنسولين، والببتيدات الفطرية، والجليسين-جليسين-تيروسين-أرجينين، والجليسين-جليسين-جليسين

3. الأجهزة والمعدات

23.2

21.4

22.2

16.1

22.3

20.8

0.93

23.9

27.5

بشكل عام، نسبة الأحماض الأمينية في منتجات سوستار أعلى من تلك الموجودة في منتجات زينبرو.

الجزء الثامن: آثار الاستخدام

تأثير مصادر مختلفة من العناصر النزرة على أداء الإنتاج وجودة بيض الدجاج البياض في أواخر فترة وضع البيض

2.40

عملية الإنتاج

1.68

تقنية الاستخلاب الموجه

تقنية الاستحلاب بالقص

تقنية الرش والتجفيف بالضغط

2.42

تكنولوجيا التبريد وإزالة الرطوبة

1.68

تكنولوجيا متقدمة للتحكم البيئي

الملحق أ: طرق تحديد التوزيع النسبي للكتلة الجزيئية للببتيدات

اعتماد المعيار: GB/T 22492-2008

1. مبدأ الاختبار:

تم تحديد ذلك باستخدام كروماتوغرافيا الترشيح الهلامي عالية الأداء. أي باستخدام حشو مسامي كطور ثابت، وبناءً على الفرق في الحجم النسبي للكتلة الجزيئية لمكونات العينة المراد فصلها، تم الكشف عنها عند طول موجة امتصاص الأشعة فوق البنفسجية 220 نانومتر لرابطة الببتيد، وباستخدام برنامج معالجة البيانات المخصص لتحديد توزيع الكتلة الجزيئية النسبية بواسطة كروماتوغرافيا الترشيح الهلامي (أي برنامج GPC)، تمت معالجة الكروماتوغرامات وبياناتها، وحُسبت للحصول على حجم الكتلة الجزيئية النسبية لببتيد فول الصويا ونطاق التوزيع.

2. الكواشف

يجب أن تفي المياه التجريبية بمواصفات المياه الثانوية في GB/T6682، ويجب أن تكون الكواشف المستخدمة نقية تحليليًا، باستثناء الأحكام الخاصة.

2.1 تشمل الكواشف الأسيتونيتريل (نقي كروماتوغرافيا)، وحمض ثلاثي فلورو الأسيتيك (نقي كروماتوغرافيا)،

2.2 المواد القياسية المستخدمة في منحنى معايرة التوزيع النسبي للكتلة الجزيئية: الأنسولين، والببتيدات الفطرية، والجليسين-جليسين-تيروسين-أرجينين، والجليسين-جليسين-جليسين

3. الأجهزة والمعدات

3.1 جهاز كروماتوغرافيا سائلة عالي الأداء (HPLC): محطة عمل كروماتوغرافية أو جهاز تكامل مزود بكاشف للأشعة فوق البنفسجية وبرنامج معالجة بيانات GPC.

3.2 وحدة ترشيح وإزالة الغازات بالتفريغ للمرحلة المتحركة.

3.3 ميزان إلكتروني: قيمة مدرجة 0.000 1 غرام.

4 خطوات تشغيلية

4 خطوات تشغيلية
0.45

4.1 ظروف الفصل الكروماتوغرافي وتجارب تكييف النظام (الظروف المرجعية)

  • 4.1.1 عمود كروماتوغرافي: TSKgelG2000swxl300 مم × 7.8 مم (القطر الداخلي) أو أعمدة هلامية أخرى من نفس النوع ذات أداء مماثل مناسبة لتحديد البروتينات والببتيدات.
  • 4.1.2 الطور المتحرك: أسيتونيتريل + ماء + حمض ثلاثي فلورو أسيتيك = 20 + 80 + 0.1.
  • 4.1.3 طول موجة الكشف: 220 نانومتر.
  • 4.1.4 معدل التدفق: 0.5 مل/دقيقة.
  • 4.1.5 وقت الكشف: 30 دقيقة.
  • 4.1.6 حجم حقن العينة: 20 ميكرولتر.
  • 4.1.7 درجة حرارة العمود: درجة حرارة الغرفة.
  • 4.1.8 من أجل جعل نظام الكروماتوغرافيا يلبي متطلبات الكشف، تم اشتراط أنه في ظل ظروف الكروماتوغرافيا المذكورة أعلاه، فإن كفاءة عمود الكروماتوغرافيا الهلامية، أي العدد النظري للصفائح (N)، لا تقل عن 10000 محسوبة على أساس قمم معيار الببتيد الثلاثي (جليسين-جليسين-جليسين).
  • 4.2 إنتاج منحنيات معايرة الكتلة الجزيئية النسبية
  • تم تحضير محاليل قياسية مختلفة من الببتيدات ذات كتل جزيئية نسبية مختلفة، بتركيز كتلي 1 ملغم/مل، باستخدام تقنية مطابقة الطور المتحرك. خُلطت المحاليل بنسب محددة، ثم رُشحت عبر غشاء طور عضوي بمسام يتراوح قطرها بين 0.2 و0.5 ميكرومتر، وحُقنت في العينة، ثم حُصل على مخططات كروماتوغرافية للمعايير. حُصل على منحنيات معايرة الكتلة الجزيئية النسبية ومعادلاتها برسم لوغاريتم الكتلة الجزيئية النسبية مقابل زمن الاحتفاظ، أو باستخدام الانحدار الخطي.

4.3 معالجة العينة

0.29

قم بوزن 10 ملغ من العينة بدقة في قارورة حجمية سعتها 10 مل، وأضف القليل من الطور المتحرك، وقم بالرج بالموجات فوق الصوتية لمدة 10 دقائق، بحيث تذوب العينة تمامًا وتختلط، ثم قم بتخفيفها بالطور المتحرك حتى تصل إلى المقياس، ثم قم بترشيحها من خلال غشاء طور عضوي بمسام حجمها 0.2 ميكرومتر ~ 0.5 ميكرومتر، وتم تحليل الراشح وفقًا لشروط الكروماتوغرافيا في A.4.1.

  • 5. حساب التوزيع النسبي للكتلة الجزيئية
  • بعد تحليل محلول العينة المُحضر في الخطوة 4.3 وفقًا لشروط الاستشراب المذكورة في الخطوة 4.1، يُمكن الحصول على الكتلة الجزيئية النسبية للعينة ونطاق توزيعها من خلال إدخال بيانات الاستشراب الخاصة بالعينة في منحنى المعايرة 4.2 باستخدام برنامج معالجة بيانات GPC. ويمكن حساب توزيع الكتل الجزيئية النسبية للببتيدات المختلفة باستخدام طريقة توحيد مساحة الذروة، وفقًا للصيغة التالية: X = A/A₀ × 100
  • في الصيغة: X - الكسر الكتلي للببتيد ذي الكتلة الجزيئية النسبية في إجمالي الببتيد في العينة، %؛
  • أ - مساحة الذروة لببتيد ذي كتلة جزيئية نسبية؛
  • المجموع الكلي أ - مجموع مساحات الذروة لكل ببتيد ذي كتلة جزيئية نسبية، محسوبة إلى منزلة عشرية واحدة.
  • 6. قابلية التكرار
  • يجب ألا يتجاوز الفرق المطلق بين قياسين مستقلين تم الحصول عليهما في ظل ظروف التكرار 15٪ من المتوسط ​​الحسابي للقياسين.
  • الملحق ب: طرق تحديد الأحماض الأمينية الحرة
  • اعتماد المعيار: Q/320205 KAVN05-2016
  • 1.2 الكواشف والمواد
  • حمض الخليك الجليدي: نقي تحليليًا
  • حمض البيركلوريك: 0.0500 مول/لتر
  • المؤشر: 0.1% مؤشر بنفسجي كريستالي (حمض الخليك الجليدي)
  • 2. تحديد الأحماض الأمينية الحرة

تم تجفيف العينات عند درجة حرارة 80 درجة مئوية لمدة ساعة واحدة.

ضع العينة في وعاء جاف لتبرد بشكل طبيعي إلى درجة حرارة الغرفة أو لتبرد إلى درجة حرارة قابلة للاستخدام.قم بوزن ما يقرب من 0.1 غرام من العينة (بدقة تصل إلى 0.001 غرام) في دورق مخروطي جاف سعة 250 مل.انتقل بسرعة إلى الخطوة التالية لتجنب امتصاص العينة للرطوبة المحيطةأضف 25 مل من حمض الخليك الجليدي واخلط جيداً لمدة لا تزيد عن 5 دقائق.أضف قطرتين من مؤشر البنفسجي البلوريقم بالمعايرة باستخدام محلول معايرة قياسي من حمض البيركلوريك بتركيز 0.0500 مول / لتر (±0.001) حتى يتغير لون المحلول من البنفسجي إلى نقطة النهاية.

سجل حجم المحلول القياسي المستهلك.

  • قم بإجراء الاختبار الفارغ في نفس الوقت.
  • 3. الحساب والنتائج
  • يُعبّر عن محتوى الأحماض الأمينية الحرة X في الكاشف كنسبة مئوية من الكتلة، ويتم حسابه وفقًا للصيغة التالية: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%، في الصيغة التالية:
  • ج - تركيز محلول حمض البيركلوريك القياسي بالمول لكل لتر (مول/لتر)
  • V1 - الحجم المستخدم لمعايرة العينات بمحلول حمض البيركلوريك القياسي، بالمليلترات (مل).
  • Vo - الحجم المستخدم لمعايرة الفراغ باستخدام محلول حمض البيركلوريك القياسي، بالمليلترات (مل)؛

M - كتلة العينة، بالجرام (جم).

0.1445: متوسط ​​كتلة الأحماض الأمينية المكافئة لـ 1.00 مل من محلول حمض البيركلوريك القياسي [c (HClO4) = 1.000 مول / لتر]. 4.2.3 محلول معايرة قياسي لكبريتات السيريوم: التركيز c [Ce (SO4) 2] = 0.1 مول/لتر، تم تحضيره وفقًا لـ GB/T601.
اعتماد المعايير: Q/70920556 71-2024 1. مبدأ التحديد (الحديد كمثال) تتميز معقدات الحديد مع الأحماض الأمينية بانخفاض قابليتها للذوبان في الإيثانول اللامائي، بينما تكون أيونات المعادن الحرة قابلة للذوبان في الإيثانول اللامائي، وقد تم استخدام الفرق في قابلية الذوبان بين الاثنين في الإيثانول اللامائي لتحديد معدل التمخلب لمعقدات الحديد مع الأحماض الأمينية.
في الصيغة: V1 - حجم محلول كبريتات السيريوم القياسي المستهلك لمعايرة محلول الاختبار، مل؛ الإيثانول اللامائي؛ والباقي هو نفسه البند 4.5.2 في GB/T 27983-2011. 3. خطوات التحليل
أجرِ تجربتين بالتوازي. زن 0.1 غرام من العينة المجففة عند درجة حرارة 103±2 درجة مئوية لمدة ساعة واحدة، بدقة تصل إلى 0.0001 غرام، ثم أضف 100 مل من الإيثانول اللامائي لإذابتها، ثم قم بالترشيح. اغسل المتبقي من الترشيح بـ 100 مل من الإيثانول اللامائي ثلاث مرات على الأقل، ثم انقل المتبقي إلى دورق مخروطي سعة 250 مل، وأضف 10 مل من محلول حمض الكبريتيك وفقًا للبند 4.5.3 من المواصفة القياسية GB/T27983-2011، ثم اتبع الخطوات التالية وفقًا للبند 4.5.3 "التسخين للإذابة ثم التبريد" من المواصفة القياسية GB/T27983-2011. أجرِ اختبارًا مرجعيًا في الوقت نفسه. 4. تحديد إجمالي محتوى الحديد 4.1 مبدأ التحديد هو نفسه البند 4.4.1 في GB/T 21996-2008.

4.2. الكواشف والمحاليل

4.2.1 حمض مختلط: أضف 150 مل من حمض الكبريتيك و150 مل من حمض الفوسفوريك إلى 700 مل من الماء واخلط جيداً. 4.2.2 محلول مؤشر سلفونات ثنائي فينيل أمين الصوديوم: 5 جم/لتر، تم تحضيره وفقًا لـ GB/T603. 4.2.3 محلول معايرة قياسي لكبريتات السيريوم: التركيز c [Ce (SO4) 2] = 0.1 مول/لتر، تم تحضيره وفقًا لـ GB/T601.
4.3 خطوات التحليل أجرِ تجربتين بالتوازي. زن 0.1 غرام من العينة بدقة تصل إلى 0.20001 غرام، وضعها في دورق مخروطي سعة 250 مل، أضف 10 مل من الحمض المختلط، وبعد الذوبان، أضف 30 مل من الماء و4 قطرات من محلول مؤشر سلفونات ثنائي أنيلين الصوديوم، ثم اتبع الخطوات التالية وفقًا للبند 4.4.2 من المواصفة القياسية GB/T21996-2008. أجرِ اختبارًا فارغًا في الوقت نفسه. 4.4 عرض النتائج تم حساب إجمالي محتوى الحديد X1 في مركبات الحديد مع الأحماض الأمينية من حيث الكسر الكتلي للحديد، والقيمة معبر عنها كنسبة مئوية، وفقًا للصيغة (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 V0 - محلول قياسي من كبريتات السيريوم مستخدم لمعايرة المحلول الفارغ، مل؛ V0 - محلول قياسي من كبريتات السيريوم مستخدم لمعايرة المحلول الفارغ، مل؛ ج - التركيز الفعلي لمحلول كبريتات السيريوم القياسي، مول/لتر5. حساب محتوى الحديد في المركبات المخلبيةتم حساب محتوى الحديد X2 في المركب المخلبي بدلالة الكسر الكتلي للحديد، والقيمة معبر عنها كنسبة مئوية، وفقًا للصيغة التالية: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
في الصيغة: V1 - حجم محلول كبريتات السيريوم القياسي المستهلك لمعايرة محلول الاختبار، مل؛ V2 - محلول قياسي من كبريتات السيريوم مستخدم لمعايرة المحلول الفارغ، مل؛nom1- كتلة العينة، غرام. خذ المتوسط ​​الحسابي لنتائج التحديد المتوازية كنتائج تحديد، والفرق المطلق بين نتائج التحديد المتوازية لا يزيد عن 0.3٪. 0.05585 - كتلة الحديدوز معبر عنها بالجرام بما يعادل 1.00 مل من محلول كبريتات السيريوم القياسي C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 مول/لتر.nom1- كتلة العينة، غرام. خذ المتوسط ​​الحسابي لنتائج التحديد المتوازية كنتائج تحديد، والفرق المطلق بين نتائج التحديد المتوازية لا يزيد عن 0.3٪. 6. حساب معدل التخليبمعدل التخليب X3، القيمة معبر عنها كنسبة مئوية، X3 = X2/X1 × 100الملحق ج: طرق تحديد معدل استخلاب الزينبرو

اعتماد المعيار: Q/320205 KAVNO7-2016

1. الكواشف والمواد

أ) حمض الخليك الجليدي: نقي تحليليًا؛ ب) حمض البيركلوريك: 0.0500 مول/لتر؛ ج) المؤشر: 0.1% مؤشر بنفسجي كريستالي (حمض الخليك الجليدي)

2. تحديد الأحماض الأمينية الحرة

2.1 تم تجفيف العينات عند درجة حرارة 80 درجة مئوية لمدة ساعة واحدة.

2.2 ضع العينة في وعاء جاف لتبرد بشكل طبيعي إلى درجة حرارة الغرفة أو لتبرد إلى درجة حرارة قابلة للاستخدام.

2.3 قم بوزن ما يقرب من 0.1 غرام من العينة (بدقة تصل إلى 0.001 غرام) في دورق مخروطي جاف سعة 250 مل

2.4 انتقل بسرعة إلى الخطوة التالية لتجنب امتصاص العينة للرطوبة المحيطة.

2.5 أضف 25 مل من حمض الخليك الجليدي واخلط جيداً لمدة لا تزيد عن 5 دقائق.

2.5 أضف 25 مل من حمض الخليك الجليدي واخلط جيداً لمدة لا تزيد عن 5 دقائق.

0.00

2.6 أضف قطرتين من مؤشر الكريستال البنفسجي.

0.00

2.7 قم بالمعايرة باستخدام محلول معايرة قياسي من حمض البيركلوريك بتركيز 0.0500 مول/لتر (±0.001) حتى يتغير لون المحلول من البنفسجي إلى الأخضر لمدة 15 ثانية دون تغيير اللون كنقطة نهاية.

0.00

2.8 سجل حجم المحلول القياسي المستهلك.

2.5 أضف 25 مل من حمض الخليك الجليدي واخلط جيداً لمدة لا تزيد عن 5 دقائق.
0.09

2.9 قم بإجراء الاختبار الفارغ في نفس الوقت.

  • 3. الحساب والنتائج
  • الكاتالونية
  • Physicochemical parameters

V1 - الحجم المستخدم لمعايرة العينات بمحلول حمض البيركلوريك القياسي، بالمليلترات (مل).

Vo - الحجم المستخدم لمعايرة الفراغ باستخدام محلول حمض البيركلوريك القياسي، بالمليلترات (مل)؛

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

العنوان: رقم 147، طريق تشينغبو، بلدة شوان، مقاطعة بوجيانغ، مدينة تشنغدو، مقاطعة سيتشوان، الصين

السيستينول (%)

رقم الهاتف: 86-18880477902

منتجات

0.00

المعادن النزرة غير العضوية

  • المعادن النزرة العضوية
  • السواحيلية
  • خدمة مخصصة
  • روابط سريعة

نبذة عن الشركة

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
الغوجاراتية انقر للاستفسار © جميع الحقوق محفوظة - 2010-2025. خريطة الموقع

أهم عمليات البحث

هاتف

هاتف 86-18880477902 الجاويين بريد إلكتروني

واتساب

8618880477902 الصينية فرنسي
Bird الصينية فرنسي الألمانية

الأسبانية

Aquatic animals اليابانية كوري عربي

اليونانية

تركي إيطالي
Ruminant animal g/head day January 0.75   إندونيسيا

الأفريكانية

السويدية

0.00
0.09

بولندي

  • الباسكية
  • الكاتالونية
  • Physicochemical parameters

الهندية

لاو

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

شونا

البلغارية

  • سيبوانو
  • This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
  • The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
  • الكرواتية

هولندي

Application object الأردية

الفيتناميين

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
الغوجاراتية هايتي الهوسا الكينيارواندية

همونغ

المجرية

Piglets and fattening pigs إيغبو الجاويين الكانادا

الخمير

كردي

قيرغيزستان اللاتينية
Bird 300~400 45~60 المقدوني

الملايو

المالايالامية

Aquatic animals 200~300 30~45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

0.00
0.09

النرويجية

  • البشتو
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

الصربية

سيسوتو

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

شونا

السندية

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

السواحيلية

طاجيك

التاميل

التيلجو

تايلاندي

Application object الأردية

الفيتناميين

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
اليديشية اليوروبا الزولو الكينيارواندية

أوريا

التركمان

الأويغور 250~400 37.5~60 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality;

2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion;

3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality.

Bird 300~400 45~60 1. Improve feather glossiness;

2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk;

3. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

4. Improve feed conversion and increase growth rate.

Aquatic animals January 300 45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

Ruminant animal g/head day 2.4   1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk;

2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality.

0.00
0.09

4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

  • Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

a) Mn: ≥ 10.0%

b) Total amino acids: ≥ 19.5%

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides

Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;

The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;

The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;

Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.

Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Breeding pig 200~300 30~45 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility;

2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles.

Piglets and fattening pigs 100~250 15~37.5 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance;

2. Promote growth and improve feed conversion significantly;

3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage.

Bird 250~350 37.5~52.5 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate;

3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases.

Aquatic animals 100~200 15~30 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance;

2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs.

Ruminant animal g/head day Cattle 1.25   1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage;

2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs,

and increase the newborn weight of young animals.

Goat 0.25  

Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates

0.00
S/N F: Functional attributes A: Competitive differences B: Benefits brought by competitive differences to users
1.52 Selectivity control of raw materials Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides High biological safety, avoiding cannibalism
2 Directional digestion technology for double protein biological enzyme High proportion of small molecular peptides More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability
3 Advanced pressure spray & drying technology Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed
Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations Improve the stability of feed products
4 Advanced production control technology Totally enclosed process, high degree of automatic control Safe and stable quality
5 Advanced quality control technology Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency

Part 7 Competitor Comparison

Standard VS Standard

فالين (%)
1.14
1.14

Comparison of peptide distribution and chelation rate of products

Sustar's products Proportion of small peptides(180-500) Zinpro's products Proportion of small peptides(180-500)
AA-Cu ≥74% AVAILA-Cu 78%
AA-Fe ≥48% AVAILA-Fe 59%
AA-Mn ≥33% AVAILA-Mn 53%
AA-Zn ≥37% AVAILA-Zn 56%

 

Sustar's products Chelation rate Zinpro's products Chelation rate
AA-Cu 94.8% AVAILA-Cu 94.8%
AA-Fe 95.3% AVAILA-Fe 93.5%
AA-Mn 94.6% AVAILA-Mn 94.6%
AA-Zn 97.7% AVAILA-Zn 90.6%

The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.

Comparison of the content of 17 amino acids in different products

Name of

amino acids

Sustar's Copper

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's

AVAILA

copper

Sustar's Ferrous Amino Acid C

helate Feed

Grade

Zinpro's AVAILA

iron

Sustar's Manganese

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's AVAILA

manganese

Sustar's Zinc

Amino Acid

Chelate Feed Grade

Zinpro's AVAILA

zinc

aspartic acid (%) 1.88 0.72 1.50 0.56 1.78 1.47 1.80 2.09
glutamic acid (%) 4.08 6.03 4.23 5.52 4.22 5.01 4.35 3.19
Serine (%) 0.86 0.41 1.08 0.19 1.05 0.91 1.03 2.81
Histidine (%) 0.56 0.00 0.68 0.13 0.64 0.42 0.61 0.00
Glycine (%) 1.96 4.07 1.34 2.49 1.21 0.55 1.32 2.69
Threonine (%) 0.81 0.00 1.16 0.00 0.88 0.59 1.24 1.11
Arginine (%) 1.05 0.78 1.05 0.29 1.43 0.54 1.20 1.89
Alanine (%) 2.85 1.52 2.33 0.93 2.40 1.74 2.42 1.68
Tyrosinase (%) 0.45 0.29 0.47 0.28 0.58 0.65 0.60 0.66
Cystinol (%) 0.00 0.00 0.09 0.00 0.11 0.00 0.09 0.00
Valine (%) 1.45 1.14 1.31 0.42 1.20 1.03 1.32 2.62
Methionine (%) 0.35 0.27 0.72 0.65 0.67 0.43 January 0.75 0.44
Phenylalanine (%) 0.79 0.41 0.82 0.56 0.70 1.22 0.86 1.37
Isoleucine (%) 0.87 0.55 0.83 0.33 0.86 0.83 0.87 1.32
Leucine (%) 2.16 0.90 2.00 1.43 1.84 3.29 2.19 2.20
Lysine (%) 0.67 2.67 0.62 1.65 0.81 0.29 0.79 0.62
Proline (%) 2.43 1.65 1.98 0.73 1.88 1.81 2.43 2.78
Total amino acids (%) 23.2 21.4 22.2 16.1 22.3 20.8 23.9 27.5

Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.

Part 8 Effects of use

Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period

1.31

Production Process

Production Process
  • Targeted chelation technology
  • Shear emulsification technology
  • Pressure spray & drying technology
  • Refrigeration & dehumidification technology
  • Advanced environmental control technology

Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides

Adoption of standard: GB/T 22492-2008

1 Test Principle:

It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.

2. Reagents

The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.

2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),

2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine

3 Instrument and equipment

3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.

3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.

3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.

4 Operating steps

4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)

4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.

4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.

4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.

4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.

4.1.5 Detection time: 30 min.

4.1.6 Sample injection volume: 20μL.

4.1.7 Column temperature: room temperature.

4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).

4.2 Production of relative molecular mass standard curves

The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.

4.3 Sample treatment

Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.

5. Calculation of relative molecular mass distribution

After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100

In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;

A - Peak area of a relative molecular mass peptide;

Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.

6 Repeatability

The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.

Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids

Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016

1.2 Reagents and materials

Glacial acetic acid: analytically pure

Perchloric acid: 0.0500 mol/L

Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

The samples were dried at 80°C for 1 hour.

Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.

Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture

Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.

Add 2 drops of crystal violet indicator

Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.

Record the volume of standard solution consumed.

Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:

C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate

Adoption of standards: Q/70920556 71-2024

1. Determination principle (Fe as an example)

Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.

2. Reagents & Solutions

Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.

3. Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.

4. Determination of total iron content

4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.

4.2. Reagents & Solutions

4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.

4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.

4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.

4.3 Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.

4.4 Representation of results

The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):

X1=(V-V0)×C×M×10-3×100

In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L

5. Calculation of iron content in chelates

The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100

In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;

0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.

m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.

6. Calculation of chelation rate

Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100

Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate

Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016

1. Reagents and materials

a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.

2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask

2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.

2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.

2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.

2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.

2.8 Record the volume of standard solution consumed.

2.9 Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)

In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

4. Calculation of chelation rate

The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.


Post time: Sep-17-2025